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高效植物基因组DNA提取试剂盒 FlaPure Plant
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品牌 Genesand/金沙
过期 长期有效
更新 2025-08-12 20:08
 
详细信息

FlaPure Plant DNA Extraction Kit  
高效植物基因组DNA提取试剂盒

目录号
DE711-50

产品组成
组分 规格(50次)
Buffer GP1 40 mL
Buffer GP2 10 mL
Buffer GP3 21 mL
Buffer GW2 15 mL
Buffer TE 10 mL
RNase A(10 mg/mL) 300 µL
FlaPure DNA Columns 50个
Collection Tubes(2.0 mL) 50个

保存条件
10~25℃保存12个月。

产品简介 
本试剂盒采用高效结合核酸的离心柱配合独特的缓冲液系统,适合从50~100 mg普通植物中提取基因组DNA。试剂盒基于硅胶柱纯化技术,提取过程中无需使用有毒的酚氯仿,整个提取过程只需30~40 min,可最大限度去除植物组织中的杂质,提取的基因组DNA片段完整、纯度高,可直接用于下游PCR扩增、qPCR、分子标记以及文库构建等实验。

产品特点
  1. 操作简便:30~40 min内完成数个样品的基因组DNA提取;
  2. 安全低毒:无需酚、氯仿等有毒试剂;
  3. DNA纯度高:提取的基因组DNA无杂质残留,适用于对纯度、完整性要求很高的下游实验。

适用范围
本产品适用于普通植物样品的基因组DNA提取。

注意事项
  1. 第一次使用前应在Buffer GP3和Buffer GW2中加入无水乙醇,加入量请参考瓶上标签;
  2. 植物组织样品应避免反复冻融,否则会导致提取的基因组DNA片段小且得率低;
  3. 使用前请检查Buffer GP1和Buffer GP2是否出现结晶或者沉淀,如有沉淀,请置于37℃水浴溶解摇匀后使用;
  4. 本试剂盒所有离心操作均在室温下进行。

使用方法
  1. 取植物新鲜组织50~100 mg或干重组织20 mg,加入液氮充分研磨。加入400 μL Buffer GP1和6 μL RNase A(10 mg/mL),涡旋振荡1 min,室温放置10 min,使其充分裂解;
  2. 加入130 μL Buffer GP2,充分混匀,涡旋振荡1 min;
  3. 12,000 rpm(~13,400×g)离心5 min,将上清移至新的离心管中;
  4. 加入1.5倍体积的Buffer GP3(使用前检查是否已加入无水乙醇)(例如500 μL上清液加入750 μL Buffer GP3),立即振荡15 s充分混匀,此时可能出现絮状沉淀但不影响后续实验;
  5. 将上步所得溶液和沉淀分两次加入到吸附柱FlaPure DNA Columns中(吸附柱放入收集管中),12,000 rpm(~13,400×g)离心30 s,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中;
  6. 向吸附柱中加入600 μL Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇),12,000 rpm(~13,400×g)离心30 s,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中;
注意:如吸附膜呈现绿色,向吸附柱中加入500 μL无水乙醇,12,000 rpm(~13,400×g)离心30 s,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
  1. 重复步骤6;
  2. 12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,弃废液。将吸附柱开盖置于室温数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液;
注意:此步骤目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的残留可能会影响后续的酶反应实验(酶切、PCR 等)。
  1. 将吸附柱放到一个干净离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加50~200 μL Buffer TE或ddH2O,室温放置2~5 min,12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,收集DNA溶液,如果要增加基因组DNA的得率,可以将离心得到的溶液重新加至吸附膜上,重复洗脱。将洗脱的DNA溶液置于-20℃保存。
注意:如果下游实验对pH值或EDTA敏感,建议用ddH2O洗脱,若用ddH2O洗脱应保证其pH值在7.0~8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围);若需长期保存,推荐使用Buffer TE洗脱后置于-20℃保存。

常见问题与解决办法
Q1:柱子出现堵塞?
A1:
  1. 样品用量过多。建议按照说明书推荐量进行提取;
  2. 样品富含多糖多酚类物质。处理富含多糖多酚的组织,推荐用专用试剂盒;
  3. 离心温度过低。本产品使用操作均在室温下进行。

Q2:DNA提取得率低?
A2:
  1. 样品用量过少。建议按照说明书推荐量进行提取;
  2. 样品材料质量不好。尽量选用新鲜组织样品,样品采集后应液氮速冻,然后置于-80℃保存,建议尽快提取,避免反复冻融;
  3. 样品裂解不充分。若样品过量则适当减少样品量,加入Buffer GP1后需涡旋振荡1min使其充分混匀,可适当延长裂解时间。

Q3:提取的DNA中有RNA污染?
A3:
  1. 未加入RNase A消化。请按照说明书要求加入RNase A消化;
  2. 样品中RNA含量过多。可适当增加RNase A用量或延长消化时间。