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2×SYBR Green qPCR试剂(预混ROX1型)
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品牌 umibio货号UR32071
过期 长期有效
更新 2025-08-12 19:22
 
详细信息

产品名称:2×SYBR Green qPCR 试剂(预混 ROX1 型)

产品用途:适用于实时荧光定量 PCR(qPCR)的反应试剂,适用需要 high ROX校准的仪器,如ABI 7300,StepOne Plus 等。

产品描述:

本试剂盒采用具有超强扩增能力和抗干扰能力的热启动DNA聚合酶,结合其高度优化的缓冲液体系和染料系统,使之具备了更强的扩增效率、抗干扰能力及更高的灵敏度和特异性。在相同的情况下具有起峰更早、得到的荧光信号更强、Ct值更小及熔解曲线特异性更高等特点。此外,为了进一步简化操作,本试剂盒的2×SYBR Green qPCR Master Mix预混了ROX1染料(high ROX),从而只需要将模板cDNA、引物以及ddH2O添加进去,即可进行qPCR反应。

产品组成:

组分名称

UR32070

UR32071

2×SYBR Green qPCR

Master Mix(ROX1)*

1 mL

5 mL

*包含热启动DNA聚合酶, dNTPs, Mg2+, buffer, 和 SYBR Green I染料,预混了高浓度ROX(ROX1)用于校正不同孔之间的荧光信号误差。

 

适用的仪器型号:

ABI 5700, 7000, 7300, 7700, 7900, 7900HT, 7900HT Fast; StepOne™, StepOne Plus™等

无需ROX校正的仪器型号:

Bio-Rad CFX96™, CFX384™, iCycler iQ™, iQ™5, MyiQ™, MiniOpticon™,Opticon®, Opticon 2, Chromo4™; Roche LightCyclerTM 96, Roche LightCyclerTM 480; Eppendorf Mastercycler® ep realplex, realplex 2s; Illumina Eco qPCR; Qiagen/Corbett Rotor-Gene® Q, Rotor-Gene® 3000, Rotor-Gene® 6000; Thermo Scientific PikoReal Cycler; Analytikjena qTOWER 3G; Cepheid SmartCycler®

(如果仪器不在下表中,请选用UR32081:2×SYBR Green qPCR试剂(预混ROX2型))

 

质控数据:

 

 

产品使用:

1、 使用前,将2×SYBR Green qPCR Master Mix (ROX1)试剂从-20℃冰箱中取出,室温放置5~10 min或用手紧握试剂管使之充分融化,上下颠倒5~10次充分混匀(非常重要),然后使用离心机短暂离心至管底,放在冰上备用。

2、 逆转录反应得到的cDNA建议稀释并充分混匀后再作为模板使用,这样可以提高实验的重复性。通常建议稀释5~10倍后再使用(具体的稀释倍数根据基因表达丰度来确定)。在20 μL的qPCR反应体系中如果模板cDNA稀释10倍,建议使用4 μL的cDNA(2~8 μL),按照如下表格进行qPCR反应体系的配制:

 

3、 qPCR加样体系的配制:为了使加样误差降低到最低,一般建议将cDNA和ddH2O配制成预混液,2×SYBR Green qPCR Master Mix和引物对配制成预混液,分别混匀后再依次加入到每个反应孔中(例如,对于20 μL的qPCR反应体系:每个反应孔中,cDNA和ddH2O的预混液加4 μL,2×SYBR Green qPCR Master Mix和引物对的预混液加16 μL);或者根据个人熟练掌握的加样方式进行加样。

4、 加样完成后,盖上封板膜封紧,然后用离心机1000 rpm离心1 min,将液体离心至qPCR孔板底部。

5、 qPCR反应程序如下:

 

*1:95反应5 min的目的是活化热启动酶,该步骤为必须步骤,因此不能省略;

*2:在退火&延伸这一步骤需要进行荧光信号的采集。

上述反应程序设置好后,按照仪器默认的程序添加熔解曲线。

下方表格提供了一种代表性的熔解曲线程序供参考:

关于qPCR反应是否良好的判断:

1、 如果扩增曲线呈典型的S型曲线,荧光背景信号阶段、荧光信号指数扩增阶段及平台期均完整可见,熔解曲线单峰,内参Ct值在合理范围内(通常可在13~22之间,典型的内参Ct值在15~20之间),则可认为该反应正常;

2、 同一个模板和引物的重复孔数据Ct值相差0.5以内;

3、 同时满足以上两个条件的可以认为数据可用。

常见的注意事项、操作要点及优化方法:

1、 实验开始前首先验证引物是否适用,标准与上述标准类似,主要观察扩增曲线与熔解曲线;

2、 引物验证好用后应分装几份并放在-20℃保存,以防止污染或降解;

3、 RNA及cDNA的质量均对qPCR的结果具有很大的影响,因此应尽量保证RNA不降解。 RNA提取后应尽快进行逆转录,且避免反复冻融。如果预计使用量较大,则可以一次多逆转录几管cDNA。如果不立即使用cDNA,则建议保存在-80℃冰箱。

经典案例: