His标签蛋白纯化琼脂糖凝胶
Ni-Agarose Resin
本产品 4℃运输;保存于 4℃,禁止产品冻结,长期存放请保证试剂管竖立向上,保质期 24 个月。
货号规格
goodYJ104 1 mL×10
产品简介
good本产品可以用于纯化各种表达系统融合表达的 His 重组蛋白,其是以高度交联的 4% 琼脂糖凝胶为基质,通过化学方法偶联三配位的亚氨基二乙酸 (IDA),并螯合镍离子 (Ni2+),形成比较稳定的平面四边形结构,从而有更多的位点与 His 标签上的咪唑环继续配位,达到结合目的蛋白的效果。
产品参数
自备试剂
缓冲液 | 推荐配方 |
平衡缓冲液 | 50 mM NaH2PO4, 300 mM NaCl, pH 8.0 |
漂洗缓冲液 | 50 mM NaH2PO4, 300 mM NaCl, 10 mM imidazole, pH 8.0 |
洗脱缓冲液 | 50 mM NaH2PO4, 300 mM NaCl, 250 mM imidazole, pH 8.0 |
goodgood注:所用去离子水和缓冲液在使用前建议用0.22 μm或0.45 μm滤膜过滤,减少杂质,以提高蛋白纯化效率和防止堵塞纯化柱。
操作步骤
good◆ 样本处理(以大肠杆菌表达系统为例)
good◆gg1. 离心收集大肠杆菌(4℃,4,000×g,30 min),弃上清;
good◆gg2. 用冷平衡缓冲液重悬细胞,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101);
good◆gg2. 注:所用试剂中不能含有 EDTA、EGTA 等螯合剂,DTT、巯基乙醇等还原剂,尿素、盐酸胍等变性剂。
good◆gg3. 用超声波破碎法在冰上破碎菌体,直到样品破碎完全;
good◆gg4. (可选)如果裂解物太过粘稠,可以加入RNase A(终浓度10 μg/mL)和DNase I(终浓度5 μg/mL)并在冰上孵育10~15 min;
good◆gg5. 离心收集上清(4℃,12,000×g,20 min);
good◆gg6. SDS-PAGE 分析His融合蛋白的含量及可溶性;
good◆ 纯化重组His融合蛋白
good◆gg7. 轻轻重悬 His标签蛋白纯化琼脂糖凝胶 ,吸取适量加入重力柱中,用5~10倍柱体积的冷 平衡缓冲液 平衡His琼脂糖凝胶;
good◆gg8. 将步骤5制备好的含有His融合蛋白的上清液加入到纯化柱中,流速控制为0.5~1 mL/min;
good◆gg9. 蛋白上清液全部流出纯化柱后,立刻加入 漂洗缓冲液 清洗纯化柱,所需量大约为柱体积的 10~20倍或者直到流出液的A280值达到最低且稳定;
good◆g10. 用5~10倍柱体积的现配 洗脱缓冲液 以0.5~1 mL/min的流速洗脱,收集洗脱液。或者根据流出液A280值判断,当数值陡然上升时开始接收洗脱液,直到A280数值降至最低且稳定时,停止收集。后续可根据目的蛋白的性质和用途,4℃透析到20 mM Tris-HCl,pH 8.0或者1×PBS,pH 7.4中。
good◆ 凝胶再生及储存
good◆ His标签蛋白纯化琼脂糖凝胶 可以重复使用,但随着使用次数增多,非特异性结合的蛋白聚集往往会造成流速和蛋白结合载量的下降,此时便需要对琼脂糖凝胶填料进行清洗。
good◆g11. 使用5倍纯化柱体积去离子水清洗琼脂糖凝胶填料;
good◆g12. 使用5倍柱体积100 mM EDTA(pH 8.0)剥落镍离子;
good◆g13. 使用10倍柱体积去离子水清洗填料;
good◆g14. 使用5倍柱体积0.5 M NaOH清洗填料;
good◆g15. 使用10倍柱体积去离子水清洗填料;
good◆g16. 使用3~5倍柱体积100 mM NiSO4再生挂镍;
good◆g17. 使用10倍柱体积去离子水清洗,即完成琼脂糖凝胶填料再生。
good◆g10. 注:填料再生后,可以立即使用,如不立即使用,需要将填料悬浮于等体积的20%乙醇中,置于4℃保存。
注意事项
good1. 琼脂糖凝胶应保存在储存溶液中,防止干燥;
good2. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作;
good3. 本产品仅限科研使用。
常见问题解析
问题 | 原因 | 解决方案 |
洗脱组分中没有目的蛋白 | 目的蛋白可能是包涵体,上清无蛋白 | 可以通过电泳检测蛋白提取上清中是否含有目的蛋白,包涵体蛋白需要按照相应纯化方式处理 |
目的蛋白表达量太低 | 优化表达条件 | |
目的蛋白结合比较弱,在漂洗步骤被洗脱丢失 | 提高漂洗缓冲液的pH值,或者降低咪唑的浓度 | |
目的蛋白被蛋白酶降解 | 在裂解步骤或洗涤步骤加入适量的蛋白酶抑制剂 | |
目的蛋白不能有效地从琼脂糖凝胶填料上洗脱下来 | 降低洗脱缓冲液的pH值,或者增加洗脱缓冲液中咪唑的浓度 | |
使用10~100 mM EDTA溶液剥离镍离子,同时得到目 的蛋白 | ||
回收的重组蛋白纯度不够 | 漂洗不彻底 | 增加漂洗缓冲液的用量 |
样品中含有其它His标签蛋白 | ①通过调节pH值,或者咪唑浓度来优化漂洗条件 ②通过使用其它纯化方式(如离子交换,疏水等)进一步纯化洗脱组分 | |
上样过程中蛋白发生沉淀 | 蛋白浓度太高 | 适当稀释蛋白 |
操作温度太低 | 室温下进行上样 | |
蛋白发生聚集 | 在样品和所有的缓冲液中添加稳定剂,如0.1%的Triton X-100或者Tween-20 |