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胶板尺寸: 98×84×4.1mm
凝胶尺寸: 81×74×1.5mm
浓度: 8-20%
分离范围: 2-200KDa
孔数: 15wells
上样量: 30ul
保存: 4℃ 12个月
应用: SDS-PAGE, Native PAGE, Western blot
产品简介：
万生昊天的GLASS Gel® Tris-Glycine gel是一款安全、快捷、高性能的预制凝胶，常用于PAGE和Western blot检测。 ● 采用自动化的灌胶生产技术，确保了产品质量的高稳定性和重复性。 ● 采用玻璃胶板，有效减少蛋白非特异性吸附，使蛋白条带更为敏锐，清晰。 ● 电泳时间短，使用超快电泳缓冲液(Cat.#:EZB2006)，在250V电压下，电泳20min 即可完成。 ● 胶夹打开极为轻松，只需用刀片在胶夹一侧轻轻划一下即可打开。 ● 凝胶中不含SDS, 可用于变性和非变性电泳。 ● 兼容市场上主流的mini电泳槽，如BIORAD, Invitrogen, 天能和君意东方等 ● 提供多种浓度的均一胶和梯度胶。 均一胶可选浓度：6%，7.5%，8%，10%，12%，15%。
梯度胶可选浓度：4-12%，4-15%，4-20%，8-16%，8-20%。也可以提供特殊浓度的定制服务。
注：使用Instant Bands立显蛋白电泳条带显色剂(Cat.#:PFS001P) 处理过的样品，无需剥胶，无需经过染色脱色处理，即可直接在紫外灯或者LED灯下观察到蛋白条带。配合超快电泳缓冲液(Cat.#:EZB2006) 使用，可在半个小时内完成样品处理、电泳、拍照的全部过程， 获得理想的电泳结果。
基本信息：
| 胶板尺寸：宽×高×厚度为98×84×4.1mm； | 凝胶厚度：1.5mm； |
| 凝胶尺寸为：宽×高×厚度为81×74×1.5mm； | 孔数：10孔，15孔； |
| Acr-Bis：29：1； | 最大上样量：60μl，30μl； |
| 浓缩胶：4%，1.5cm； | 包装：10片/盒。 |
Buffer 配方：
| 1X Tris-Glycine Running Buffer | |||
| For SDS-PAGE | For Native-PAGE | ||
| 25 mM | Tris | 25 mM | Tris |
| 192 mM | Glycine | 192 mM | Glycine |
| 0.1% | SDS | ||
预制胶选择指导：
| 产品编号 | 浓度 | 孔数 | 最大上样量 | 电泳缓冲液 | 转膜缓冲液 | 分离范围 | 建议电压 |
| GSG2001-6T | 6% | 10孔 | 60μl | Tris-gly | Tris-gly | 60-200kda | 180V |
| GSG2001-6F | 6% | 15孔 | 30μl | Tris-gly | Tris-gly | 60-200kda | 180V |
| GSG2001-8T | 8% | 10孔 | 60μl | Tris-gly | Tris-gly | 40-200kda | 180V |
| GSG2001-8F | 8% | 15孔 | 30μl | Tris-gly | Tris-gly | 40-200kda | 180V |
| GSG2001-10T | 10% | 10孔 | 60μl | Tris-gly | Tris-gly | 20-160kda | 180V |
| GSG2001-10F | 10% | 15孔 | 30μl | Tris-gly | Tris-gly | 20-160kda | 180V |
| GSG2001-12T | 12% | 10孔 | 60μl | Tris-gly | Tris-gly | 15-85kda | 180V |
| GSG2001-12F | 12% | 15孔 | 30μl | Tris-gly | Tris-gly | 15-85kda | 180V |
| GSG2001-15T | 15% | 10孔 | 60μl | Tris-gly | Tris-gly | 10-50kda | 180V |
| GSG2001-15F | 15% | 15孔 | 30μl | Tris-gly | Tris-gly | 10-50kda | 180V |
| GSG2001-415T | 4-15% | 10孔 | 60μl | Tris-gly | Tris-gly | 20-200kda | 180V |
| GSG2001-415F | 4-15% | 15孔 | 30μl | Tris-gly | Tris-gly | 20-200kda | 180V |
| GSG2001-420T | 4-20% | 10孔 | 60μl | Tris-gly | Tris-gly | 5-200kda | 180V |
| GSG2001-420F | 4-20% | 15孔 | 30μl | Tris-gly | Tris-gly | 5-200kda | 180V |
| GSG2001-820T | 8-20% | 10孔 | 60μl | Tris-gly | Tris-gly | 3-200kda | 180V |
| GSG2001-820F | 8-20% | 15孔 | 30μl | Tris-gly | Tris-gly | 3-200kda | 180V |
使用说明：
预制胶本身都不含SDS，可根据电泳缓冲液的不同用于变性电泳和非变性电泳
非变性胶（Native-PAGE） 1.非变性胶的蛋白迁移率受到蛋白分子量、蛋白空间结构等多种因素影响。 2.将GLASS Gel® Tris-Glycine gel预制胶从包装袋中取出。 3.将预制胶固定在电泳槽中。 4.准备非变性电泳缓冲液：万生昊天Tris-Glycine Running Buffer for Native-PAGE(Cat.#:NEZB2002)。该产品含10包电泳缓冲液粉末，每包粉末可用500ml ddH2O进行溶解，得到500ml 1X 电泳液。 5.内槽加满电泳液，外槽的电泳液最低须加到1/3液面处，不可漫过胶板，再缓慢地将梳子拔出，用移液器吸取电泳液轻轻吹打加样孔，去除加样孔内残余的储存缓冲液。 6.上样：将非变性蛋白样品与5×非变性loading buffer（ES005）进行4：1混合均匀。注意枪头不要戳破凝胶，不要过度插入梳孔使胶板变形造成漏液。 7.电泳条件：180 V, 60 min，当溴酚蓝指示带电泳至胶板底部，或实验预定位置时，即可结束电泳。 8.酸性蛋白（等电点pI<7）正常上样电泳即可。反之，碱性蛋白（等电点pI>7）带正电荷，需将电极插反（红插黑，黑插红），这时上样孔成为正极，样品向下电泳。 变性胶（SDS-PAGE） 1.请参考下面的分离图谱选择合适浓度的预制胶，以帮助您进行更好的蛋白电泳条带分离。 2.将GLASS Gel® Tris-Glycine gel预制胶从包装袋中取出。 3.将预制胶固定在电泳槽中。 4.准备电泳缓冲液：万生昊天Tris-Glycine Running Buffer(Cat.#:EZB2002)为例。该产品含10包电泳缓冲液粉末，每包粉末可用500ml ddH2O进行溶解，得到500ml 1X 电泳液。 5.内槽加满电泳液，外槽的电泳液最低须加到1/3液面处，不可漫过胶板，再缓慢地将梳子拔出，用移液器吸取电泳液轻轻吹打加样孔，去除加样孔内残余的储存缓冲液。 6.上样：将蛋白样品与5×变性loading buffer（ES003）进行4：1混合均匀，加热处理。注意枪头不要戳破凝胶，不要过度插入梳孔使胶板变型造成漏液。 7.电泳条件：180 V, 60 min，当溴酚蓝指示带电泳至胶板底部，或实验预定位置时，即可结束电泳。 8.电泳结束，取出凝胶。用刀在侧边胶处，沿着两片玻璃的缝隙切开封胶材料，即可打开玻璃板，取胶时，需在凝胶和玻璃条之间，沿着玻璃条划一刀，防止取胶时，发生粘连使胶破碎。（使用美工刀时请注意安全）
预制胶分离图谱（变性）：
拆胶： 1.先沿侧边胶处简单划一刀（或先将玻璃板侧边多余封胶材料去除）； 2.用刀在侧边胶处，沿着玻璃板和玻璃条的缝隙切开封胶材料（箭头处），轻轻打开玻璃板； 3.取胶时，需在凝胶和两侧玻璃条之间沿着玻璃条划一刀，防止取胶时发生粘连使凝胶破碎。
产品运输和保存： 1.常温运输，常温保存时应放置于阴凉处，避免温度剧烈变化和阳光直射。 2.4-8℃保存，可以存放12个月。 3.请勿置于0℃以下，凝胶在0℃以下会冻凝，产生气泡和裂纹，凝胶报废。
注意事项： 1.万生昊天的Tris-Glycine gel预制胶使用的是中性的Tris-Glycine缓冲系统。 1.1.使用我司超快电泳缓冲液（Cat.#:EZB2006）,250V仅需20min即可完成电泳； 1.2.使用万生昊天tris-glycine变性缓冲液(Cat.#:EZB2002)或非变性缓冲液 (Cat.#: NEZB2002),180V，60min； 1.3.也可根据文中的配方自行配制。 2.如果需要蛋白条带更加清晰、平直，可降低电压至150V, 适当延长电泳时间。 3.电压为180V电泳时，1块胶的电流在75mA左右，2块胶的电流在150mA左右，随着时间增加电流逐步降低。 4.电泳缓冲液不建议重复使用。因为经过电泳之后，缓冲液中的离子强度、缓冲能力都发生了变化，不能确保电泳效果。 5.湿转时120V恒压转膜60-90min。为达到更好的转膜效果，可以根据预制胶上残留的预染marker及膜上的预染marker确定转膜效率，并对转膜条件进行适当调整。目的蛋白的分子量，凝胶浓度及转膜液中的甲醇浓度都会影响转膜效率。 大蛋白尽量选择低浓度的胶。
| 蛋白分子量 | 100KD以上 | 10-100KD | 10KD以下 |
| 建议甲醇浓度 | 5% | 10% | 20%-30% |
电泳图：
