Annexin V-Alexa Fluor 647/PI 细

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Last Updated 2025-08-12 20:06

Annexin V-Alexa Fluor 647/PI 细

货号:AF2021-100T

储存条件: 4℃避光冷藏,请勿冻存。

产品组分

组分

AF2021-100T

1×Annexin V 结合缓冲液

50 mL×2

YF®647A-Annexin V

500 μL

PI

1 mL

 

光谱特性

 

YF®647A-Annexin V:Ex/Em = 650/665 nm

PI:Ex/Em = 535/617 nm (with DNA)

产品简介

YF®647A-Annexin V和PI凋亡试剂盒提供了一种快速简便的方法,通过标记早期凋亡细胞(远红)和坏死细胞(红色),用于检测细胞凋亡水平。产品可以使用流式细胞仪或其它荧光检测设备进行检测。

YF®647A-Annexin V 可以标记凋亡细胞。Annexin V 选择性结合磷酯酰丝氨酸(phosphatidylserine,简称 PS)。在细胞发生早期凋亡时,磷酯酰丝氨酸会外翻到细胞表面,即细胞膜外侧。用远红荧光探针 YF®647A 标记的 Annexin V,即 YF®647A-Annexin V,可以结合外翻的磷酯酰丝氨酸,从而检测细胞凋亡的重要特征。 YF®647A 染料与荧光素/FITC 相比,荧光亮度更高,且不受环境中 pH 的影响,具有良好的光稳定性。

碘化丙啶(Propidium Iodide, PI)是一种 DNA 结合染料,它可以染色坏死细胞或凋亡晚期丧失细胞膜完整性的细胞的细胞核。PI 可以由 488,532 或 546 nm 的激光激发,呈现红色荧光。

使用方法

下列实验方案以星形孢菌素诱导 Jurkat 细胞凋亡为例。如果使用其他诱导剂和其他类型的细胞,实验条件需要调整。

1.流式细胞检测

(1)根据实验要求诱导细胞凋亡。检测样品中应包含未经处理的细胞样品,作阴性对照;一组样品做单染,用于调节补偿。

(2)收集细胞。

悬浮细胞:300 g,4℃离心5 min收集细胞;

贴壁细胞:用不含EDTA的胰酶消化后300 g,4℃ 离心5 min收集细胞,胰酶消化时间不宜过长,以防引起假阳性。

注:细胞用胰蛋白酶消化后,在最佳培养条件和培养基中恢复约30 min后染色,避免假阳性。

(3)用预冷的PBS洗涤细胞两次,300 g,4℃下离心5 min,收集1-5×105个细胞并用100 μL 1×结合缓冲液重悬细胞。

(4)每管加入4-5 μL的YF®647A -Annexin V和5 μL的PI工作液。

注:推荐准备两管额外的细胞,每管只加入一种单染染料 (YF®647A-Annexin V 和 PI),用于流式单染的补偿调节。 

 (5)室温避光孵育10-15 min,为避免细胞凋亡进程,孵育过程可在冰上操作。

 

(6)每管加入400 μL的PBS或1×结合缓冲液重悬细胞(PBS 或1× 结合缓冲液的选择根据不同凋亡处理以及不同细胞具体选择),尽快通过流式细胞仪检测细胞凋亡情况。 YF®647A-Annexin V可以由647 nm激光激发,检测荧光发射光谱约在647 nm处(APC通道),PI发射光谱约在617 nm处。 

2.荧光显微镜检测

(1)将细胞接种在盖玻片或载玻片小室中。

(2)根据实验要求诱导细胞凋亡。检测样品中应包含未经处理的细胞样品,作为阴性对照。

(3)用PBS洗涤细胞。

注:可以用含血清的培养基直接替代Annexin V结合缓冲液,但是Annexin V的使用浓度需要重新优化。建议梯度测试。

(4)每100 μL的Annexin V结合缓冲液中加入5-25 μL的 YF®647A-Annexin V和5 μL的PI。

注:最佳使用浓度由具体实验要求确定。

(5)向培养板中加入足量的染液以覆盖全部细胞,室温避光孵育15-30 min。为降低细胞凋亡进程,孵育过程可在冰上

操作,但孵育时间至少延长至30 min。

(6)用1×结合缓冲液清洗细胞。

(7)将孵育有细胞的盖玻片置于载玻片上,载玻片可提前加一滴1×结合缓冲液;对于培养在小室内的细胞,可直接加入足量的1×结合缓冲液覆盖细胞。

(8)使用合适的滤光片在荧光显微镜下观察细胞。 YF®647A-Annexin V 可用 APC 适用的滤光片,PI 可用 Cy3或者 Texas 滤光片。

注意事项

1. 荧光染料均存在淬灭问题,请尽量注意避光,以减缓荧光淬灭。

2. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

3. 本产品仅用于科研 。

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