FlaPure Plant DNA Extraction Kit
高效植物基因组DNA提取试剂盒
目录号
DE711-50
产品组成
组分 | 规格(50次) |
Buffer GP1 | 40 mL |
Buffer GP2 | 10 mL |
Buffer GP3 | 21 mL |
Buffer GW2 | 15 mL |
Buffer TE | 10 mL |
RNase A(10 mg/mL) | 300 µL |
FlaPure DNA Columns | 50个 |
Collection Tubes(2.0 mL) | 50个 |
保存条件
10~25℃保存12个月。
产品简介
本试剂盒采用高效结合核酸的离心柱配合独特的缓冲液系统,适合从50~100 mg普通植物中提取基因组DNA。试剂盒基于硅胶柱纯化技术,提取过程中无需使用有毒的酚氯仿,整个提取过程只需30~40 min,可最大限度去除植物组织中的杂质,提取的基因组DNA片段完整、纯度高,可直接用于下游PCR扩增、qPCR、分子标记以及文库构建等实验。
产品特点
- 操作简便:30~40 min内完成数个样品的基因组DNA提取;
- 安全低毒:无需酚、氯仿等有毒试剂;
- DNA纯度高:提取的基因组DNA无杂质残留,适用于对纯度、完整性要求很高的下游实验。
适用范围
本产品适用于普通植物样品的基因组DNA提取。
注意事项
- 第一次使用前应在Buffer GP3和Buffer GW2中加入无水乙醇,加入量请参考瓶上标签;
- 植物组织样品应避免反复冻融,否则会导致提取的基因组DNA片段小且得率低;
- 使用前请检查Buffer GP1和Buffer GP2是否出现结晶或者沉淀,如有沉淀,请置于37℃水浴溶解摇匀后使用;
- 本试剂盒所有离心操作均在室温下进行。
使用方法
- 取植物新鲜组织50~100 mg或干重组织20 mg,加入液氮充分研磨。加入400 μL Buffer GP1和6 μL RNase A(10 mg/mL),涡旋振荡1 min,室温放置10 min,使其充分裂解;
- 加入130 μL Buffer GP2,充分混匀,涡旋振荡1 min;
- 12,000 rpm(~13,400×g)离心5 min,将上清移至新的离心管中;
- 加入1.5倍体积的Buffer GP3(使用前检查是否已加入无水乙醇)(例如500 μL上清液加入750 μL Buffer GP3),立即振荡15 s充分混匀,此时可能出现絮状沉淀但不影响后续实验;
- 将上步所得溶液和沉淀分两次加入到吸附柱FlaPure DNA Columns中(吸附柱放入收集管中),12,000 rpm(~13,400×g)离心30 s,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中;
- 向吸附柱中加入600 μL Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇),12,000 rpm(~13,400×g)离心30 s,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中;
- 重复步骤6;
- 12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,弃废液。将吸附柱开盖置于室温数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液;
- 将吸附柱放到一个干净离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加50~200 μL Buffer TE或ddH2O,室温放置2~5 min,12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,收集DNA溶液,如果要增加基因组DNA的得率,可以将离心得到的溶液重新加至吸附膜上,重复洗脱。将洗脱的DNA溶液置于-20℃保存。
常见问题与解决办法
Q1:柱子出现堵塞?
A1:
- 样品用量过多。建议按照说明书推荐量进行提取;
- 样品富含多糖多酚类物质。处理富含多糖多酚的组织,推荐用专用试剂盒;
- 离心温度过低。本产品使用操作均在室温下进行。
Q2:DNA提取得率低?
A2:
- 样品用量过少。建议按照说明书推荐量进行提取;
- 样品材料质量不好。尽量选用新鲜组织样品,样品采集后应液氮速冻,然后置于-80℃保存,建议尽快提取,避免反复冻融;
- 样品裂解不充分。若样品过量则适当减少样品量,加入Buffer GP1后需涡旋振荡1min使其充分混匀,可适当延长裂解时间。
Q3:提取的DNA中有RNA污染?
A3:
- 未加入RNase A消化。请按照说明书要求加入RNase A消化;
- 样品中RNA含量过多。可适当增加RNase A用量或延长消化时间。